SANL30 Técnico en Inmunología

UNIDAD DIDÁCTICA 1. ORGANIZACIÓN Y GESTIÓN DE UN LABORATORIO

1. Documentación sanitaria.
2. – Documentación clínica.
3. – Documentación no clínica.
4. Organización jerárquica y departamental de un centro sanitario.
5. – Organigramas de centros sanitarios.
6. – Organigrama de un laboratorio.
7. – Funciones del personal de un laboratorio.
8. Normas de seguridad en el trabajo referidas a los aparatos y las instalaciones de los laboratorios clínicos para la prevención de riesgos físicos y químicos.
9. Gestión de existencias.
10. – Sistemas de almacenamiento.
11. – Métodos de valoración de existencias.
12. – Normas de seguridad e higiene en los almacenes de centros sanitarios.
13. Conservación de equipos.
14. – Tipos de equipos de un laboratorio clínico.
15. – Mantenimiento periódico de los equipos de laboratorio.
16. – Medidas a tomar en caso de fallo de los equipos.
17. Aplicaciones informáticas.
18. – Conocimientos básicos de informática.
19. – Tipos y estructura de las bases de datos.
20. – Aplicaciones informáticas de gestión y control de almacén.
21. Estadística básica.
22. – Medidas de tendencia central.
23. – Medidas de dispersión.
24. – Representaciones gráficas de resultados.
25. Información científico_técnica.
26. – Estructura de presentación de la información científica.
27. – Búsqueda de información en bases de datos sanitarias.

UNIDAD DIDÁCTICA 2. TÉCNICAS DE PROCESAMIENTO DE MUESTRAS BIOLÓGICAS

1. Muestras biológicas humanas:
2. – Concepto de espécimen y de muestra.
3. – Características generales de la sangre.
4. * Diferencia entre sangre venosa y sangre capilar.
5. * Uso de sangre en ayunas.
6. * Utilización de suero o plasma.
7. * Hemólisis, lipemia o ictericia como fuentes de error.
8. * Anticoagulantes.
9. – Características generales de la orina.
10. * Sustancias y elementos, formas analizables en muestras de orina.
11. – Características generales de las heces.
12. – Muestras seminales; LCR, líquidos serosos, exudados vaginales, exudados uretrales, exudados óticos, exudados conjuntivales y exudados nasofaríngeos; esputo y hemocultivos.
13. Obtención de muestras biológicas.
14. – Obtención de plasma y suero.
15. – Recogida de orina.
16. – Recogida de heces.
17. Manipulación de las muestras biológicas.
18. – Sistemas de transporte de las muestras.
19. – Sistemas de recepción, identificación y distribución de las muestras.
20. – Centrifugación de las muestras: fundamento de las técnicas de centrifugación.
21. – Conservación de las muestras biológicas.
22. – Normas de seguridad e higiene para la prevención de riesgos biológicos.
23. Cálculos en la realización de diluciones.
24. Normas de seguridad e higiene en la manipulación de muestras biológicas.

UNIDAD DIDÁCTICA 3. TÉCNICAS INMUNOLÓGICAS

1. Fisiología de la respuesta inmune.
2. – Inmunidad celular.
3. – Concepto de antígeno y formación de anticuerpos.
4. – Reacción antígeno_anticuerpo.
5. – Sistema de complemento.
6. – Antígenos de histocompatibilidad.
7. – Mecanismos de la respuesta inmune.
8. – Autoinmunidad, inmunodeficiencia e hipersensibilidad.
9. Técnicas de análisis basadas en la precipitación y aglutinación de complejos antígeno_anticuerpo.
10. – Precipitación en medio líquido.
11. – Técnicas de precipitación en gel.
12. – Técnicas de aglutinación con hematíes y látex.
13. – Técnicas de inhibición de la aglutinación.
14. – Fijación del complemento.
15. Inmunoensayos.
16. – Radioinmunoensayos.
17. – Enzimainmunoensayos.
18. – Fluoroinmunoensayos.
19. – Ensayos con marcadores quimioluminiscentes y bioluminiscentes.
20. Inmunofluorescencia.
21. – Microscopio de fluorescencia.
22. – Fluoróforos.
23. – Inmunofluorescencia directa.
24. – Inmunofluorescencia indirecta.
25. Control de calidad de las técnicas inmunológicas.
26. – Controles internos y controles externos.
27. – Programas de control de calidad.
28. – Coeficientes de variación.
29. – Gráficos de control de calidad.

UNIDAD DIDÁCTICA 4. TÉCNICAS DE DETERMINACIÓN DE METABOLITOS EN QUÍMICA CLÍNICA

1. Estructura, función y metabolismo de las sustancias analizables en el laboratorio de Química Clínica.
2. – Estructura química y conceptos metabólicos básicos sobre glúcidos, lípidos y proteínas.
3. – Enzimología clínica.
4. – Fisiología del equilibrio hidroelectrolítico y ácido_base del organismo.
5. Espectrofotometría de absorción y dispersión.
6. – Interacción de la radiación y la materia: absorción y dispersión de luz.
7. – Ley de Lambert_Beer.
8. – Transmitancia y absorbancia.
9. – Componentes de un fotómetro y de un espectrofotómetro.
10. – Cálculo de las concentraciones mediante el uso de patrones y curvas de calibrado.
11. – Tipos de autoanalizadores utilizados en Bioquímica.
12. – Nefelometría y turbidimetría.
13. Espectrofotometría de emisión y absorción atómica.
14. – Fundamentos físicos de la fotometría de llama.
15. – Componentes de un fotómetro de llama.
16. – Fundamentos físicos de la espectrofotometría de absorción atómica.
17. – Componentes de un espectrofotómetro de absorción atómica.
18. – Uso de patrones en la espectrofotometría de absorción atómica.
19. Técnicas basadas en la detección de potenciales eléctricos.
20. – Ecuación de Nernst.
21. – Ecuación de Henderson_Hasselbach.
22. – Determinación de concentraciones mediante electrodos.
23. – Tipos de electrodos.
24. Control de calidad en Química Clínica.
25. – Controles internos y controles externos.
26. – Programas de control de calidad.
27. – Coeficientes de variación.
28. – Gráficos de control de calidad.

UNIDAD DIDÁCTICA 5. TÉCNICAS DE SEPARACIÓN EN BIOQUÍMICA

1. Electroforesis.
2. – Fundamento teórico de la separación electroforética.
3. – Componentes de un equipo de electroforesis.
4. – Tipos de soporte.
5. – Preparación de los soportes.
6. – Aplicación de la muestra.
7. – Revelado de las placas de electroforesis.
8. – Densitometría.
9. Técnicas electroforéticas especiales.
10. – Isoelectroenfoque.
11. – Electroforesis en SDS.
12. – Inmunoelectroforesis.
13. – Electroinmunodifusión.
14. Cromatografía.
15. – Fundamento teórico de las separaciones cromatográficas.
16. – Clasificación de las técnicas cromatográficas.
17. – Cromatografía en papel, cromatografía en capa fina y cromatografía en columna.
18. – Definición y cálculo de los parámetros utilizados en las separaciones cromatográficas.
19. – Mecanismos de separación.
20. – Cromatógrafos empleados en HPLC y cromatografía de gases.
21. Determinación de fármacos y drogas de abuso.
22. – Tipos/clasificación de fármacos y drogas de abuso.
23. – Monitorización de fármacos terapéuticos.
24. – Detección de drogas de abuso.
25. Control de calidad de las técnicas electroforéticas y cromatográficas.
26. – Controles internos y controles externos.
27. – Programas de control de calidad.
28. – Coeficientes de variación.
29. – Gráficos de control de calidad.

UNIDAD DIDÁCTICA 6. TÉCNICAS DE ANÁLISIS MOLECULAR

1. Estructura y función de los ácidos nucleicos.
2. – Estructura del núcleo, la cromatina y los cromosomas.
3. – El ácido desoxirribonucleico como material genético.
4. – Desnaturalización del ADN.
5. – Replicación, transcripción y traducción de la información genética.
6. – Principios básicos de la regulación genética.
7. – Alteraciones en el ADN: mutaciones.
8. Objetivos y técnicas de los estudios cromosómicos.
9. – Cultivos de linfocitos y de fibroblastos.
10. – Preparación de las muestras.
11. – Microfotografías e identificación de los cromosomas.
12. Técnicas básicas en el diagnóstico molecular.
13. – Electroforesis de ácidos nucleicos.
14. – Sondas genéticas. Técnicas de marcado de sondas.
15. – Técnicas de transferencia e hibridación de ácidos nucleicos y proteínas: Southern, Northern y Western “blotting”, “Dot Blot” e Hibridación “in situ”.
16. – Enzimas de restricción y técnicas de ruptura inespecífica de ADN.
17. – Tecnología del ADN recombinante.
18. – ADNc.
19. – Amplificación mediante la reacción en cadena de la polimerasa (PCR).
20. – Análisis de secuencias de ADN.
21. – Transferencia de ADN a células eucariotas.
22. Aplicación de la genética molecular a:
23. – Aplicación de la genética molecular al diagnóstico de enfermedades hereditarias.
24. * Análisis molecular directo e indirecto.
25. * Ejemplos de patologías estudiadas mediante técnicas de genética molecular.
26. – Aplicación de la genética molecular al estudio de enfermedades genéticas adquiridas (cáncer).
27. * Funciones de los oncogenes y factores de crecimiento.
28. * Genes de familia ras.
29. – Aplicación de la genética molecular al estudio de las patologías infecciosas.
30. – Aplicaciones de la genética molecular en medicina legal y forense.