UF2470 Técnicas de Separación de ADN, ARN y Proteínas de Muestras Biológicas

En el ámbito de agraria, es necesario conocer los diferentes campos de la realización de procedimientos experimentales con animales para investigación y otros fines científicos, dentro del área profesional ganadería. Así, con el presente curso se pretende aportar los conocimientos necesarios para realizar análisis de biología molecular en muestras biológicas.

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UNIDAD FORMATIVA 1. TÉCNICAS DE SEPARACIÓN DE ADN, ARN Y PROTEÍNAS DE MUESTRAS BIOLÓGICAS

UNIDAD DIDÁCTICA 1. OBTENCIÓN, MANIPULACIÓN Y PROCESAMIENTO DE MUESTRAS BIOLÓGICAS PARA ANÁLISIS DE ADN, ARN Y PROTEÍNAS

  1. Tipos de muestras para análisis de ADN, ARN y proteínas.
  2. – Extracción de ADN (a partir de sangre, tejidos o células en cultivo, células bucales,…)
  3. – Extracción de ARN (mediante tiocianato de guanidina, urea-cloruro de lítio, purificación de poli(A)-ARN,
  4. Determinación analítica. Perfil analítico. Cartera de servicios.
  5. – Determinación de ácidos nucleicos
  6. – Separación analítica y preparativa del ADN (electroforesis analítica, geles de agarosa, …)
  7. Errores más comunes en la manipulación de las muestras.
  8. – Identificación y etiquetado de las muestras
  9. – Contaminación (por RNAsas, DNA,…)
  10. – Degradación enzimática
  11. Características generales de la obtención y procesamiento de muestras para análisis de ADN, ARN y proteínas.
  12. – Obtención de ADN y ARN a partir de tejidos líquidos (anticoagular)
  13. – Inhibidores RNAsas
  14. Prevención de riesgos en la obtención, manipulación y procesamiento de muestras biológicas.
  15. – Recepción o toma de muestras. Medidas preventivas
  16. – Precauciones generales relativas al laboratorio
  17. – Precauciones durante el desarrollo del trabajo
  18. – Reglas de higiene personal

UNIDAD DIDÁCTICA 2. CONSERVACIÓN Y TRANSPORTE DE MUESTRAS BIOLÓGICAS PARA ANÁLISIS DE ADN, ARN Y PROTEÍNAS

  1. Etiquetado e identificación de las muestras.
  2. Sistemas y formatos de archivos. Sistemas de almacenamiento.
  3. Equipos de almacenamiento (-20ºC, – 80º C)
  4. Transporte de muestras (ADN: descongeladas, tubos estabilizadores ARN, tiempo de transporte recomendado 72 horas. ARN, congelado mediante agentes crioprotectores y con inhibidores de ARNAsas).
  5. Prevención de riesgos en la conservación y transporte de muestras biológicas.
  6. – Precauciones durante el desarrollo del trabajo
  7. – Reglas de higiene personal
  8. – Almacenamiento de muestras biológicas. Zonas de acceso restringido. Contenedores específicos. Manejo con EPIs
  9. – Transporte de material biológico. Sistema básico de embalaje. Identificación

UNIDAD DIDÁCTICA 3. BIOLOGÍA MOLECULAR: ADN, ARN Y PROTEÍNAS

  1. Composición molecular, estructura y función de los ácidos nucleicos.
  2. – Composición química y estructura de los ácidos nucleicos: Nucleótidos de importancia biológica y Factores que estabilizan la doble hélice
  3. – Funciones de los ácidos nucleicos
  4. Descripción de las enzimas asociadas a los ácidos nucleicos.
  5. – Endonucleasas (Tipo 1 y 2)
  6. – Polimerasas
  7. – Ligasas
  8. – Nucleasas
  9. – Fosfatasas
  10. – Quinasas
  11. – ARNasas
  12. Replicación del ADN.
  13. – Modo semiconservativo
  14. – Horqueta de replicación
  15. – Enzimas que intervienen en el proceso
  16. – Molécula accesoria: Iniciador
  17. Transcripción del ADN y su control.
  18. – Proceso: Cadena molde o antisentido. ARNm o transcripto primario. Enzima que dirige: polimerasa de ARN
  19. – Modificaciones postranscripcionales.
  20. Mecanismos de reparación del ADN.
  21. – Agentes genotóxicos y mecanismos de reparación del DNA
  22. – Reparación de dímeros de pirimidinas mediante fotoreactivación
  23. – Remoción de grupos metilo
  24. – Bases mal apareadas
  25. – Metilación del DNA
  26. – Reparación del DNA durante o después de su replicación
  27. – Reparación de cortes en ambas cadenas del DNA
  28. – Sistemas De reparación de DNA: NER (Nucleotide Excision Repair)
  29. – Mecanismos de reparación de DNA: BER (Base escisión Repair)
  30. Mutaciones del ADN, alteraciones en las proteínas que sintetizan y enfermedades asociadas.
  31. – Alteraciones que puede sufrir el ADN: Mismatch (mal apareamiento), Desaminación, Pérdida de bases, Unión covalente entre bases de la misma cadena, Unión de grupos alquilo, Ruptura de simple cadena (nick) y Ruptura de doble cadena
  32. – Alteraciones en las proteínas que se sintetizan y enfermedades asociadas. Desnaturalización
  33. Estructura y función de las proteínas.
  34. – Aminoácidos y neurotransmisores
  35. – Enlaces peptídicos, oligopeptidos y polipeptidos
  36. – Estructura primaria, secundaria , terciaría y cuaternaria
  37. – Funciones de las proteínas: estructural, reguladora, de transporte, de reserva, enzimática, mensajera y de receptores químicos
  38. Transcripción y traducción.
  39. – Moléculas implicadas en la transcripción y traducción de las proteínas
  40. – Fases de la transcripción de las proteínas
  41. – Fases de la traducción de las proteínas
  42. – Regulación de la transcripción y traducción
  43. Síntesis y modificación de las proteínas.
  44. – Moléculas implicadas en la síntesis y traducción de las proteínas
  45. – Fases de la síntesis de las proteínas
  46. – Fases de la modificación de las proteínas
  47. – Regulación de la síntesis y modificación de las proteínas
  48. Alteraciones conformacionales de las proteínas.
  49. – Serpinopatías
  50. – Proteínas priónicas
  51. – Neuroserpinas
  52. – Hemoglobina
  53. – Repeticiones de glutamato
  54. – Proteína Tau
  55. – Inmunoglobulinas cadenas ligeras
  56. – Proteína CFRT Péptido B-amiloide
  57. – Superóxido dismutasa
  58. – B2 microglobulina

UNIDAD DIDÁCTICA 4. METODOLOGÍA APLICADA A LA SEPARACIÓN E IDENTIFICACIÓN DE PROTEÍNAS

  1. Electroforesis.
  2. – Tipos de electroforesis: unidimensionales, bidimensionales y técnicas relacionadas.
  3. – Separación electroforética de las proteínas séricas. Patrones de normalidad y de alteración
  4. – Características del material y de los reactivos. Averías o disfunciones
  5. Técnicas cromatográficas.
  6. – Características de los equipos. Condiciones de uso y mantenimiento
  7. – Calibración. Averías o disfunciones
  8. – Características del material y de los reactivos
  9. Técnicas de inmunodetección.
  10. – Inmunocitoquímica
  11. – Western blot
  12. – Inmunoprecipitación
  13. – Co-inmunoprecipitación
  14. – Pull-down
  15. – TUNEL
  16. Espectrometría de masas.
  17. – Fundamento y aplicaciones.
  18. – Características de los equipos.
  19. – Condiciones de uso y mantenimiento. Calibración. Averías o disfunciones.
  20. – Características del material y de los reactivos.
  21. Tecnología de microarrays y chips de proteínas.
  22. – Microarrays de ADN: Diseño de un microarrays de ADN. Tipos
  23. – Microarrays de Proteínas: Diseño de un microarrays de proteínas. Tipos
  24. – Microarrays de Carbohidratos: Diseño de microarrays de carbohidratos. Aplicaciones
  25. – Microarrays de Células
  26. – Microarrays de Tejidos
  27. – Perspectivas de mercado de los microarrays y biochips en el área de salud humana
  28. Bioinformática. Bases de datos de proteómica.
  29. – Genómica funcional
  30. – Relación entre la biología y la informática
  31. – Biochips
  32. – Bioinformática
  33. – Bibliografía

248,00 

Detalles del Curso

Información adicional

Horas 60 Horas
Modalidad ONLINE

¿Por qué elegir Aurea?

Metodología de Aprendizaje Online

  • Aprendizaje activo y autónomo: A diferencia de la formación presencial, en el e-learning es clave fomentar que el alumno sea protagonista de su propio proceso de aprendizaje.

  • Microlearning y contenidos modulares: Lecciones breves, bien estructuradas, que permitan avanzar paso a paso.

  • Gamificación y elementos interactivos (cuestionarios, simulaciones, casos prácticos) aumentan la motivación y retención del conocimiento.

  • Evaluación continua: No solo exámenes finales, sino también foros, tareas prácticas y autoevaluaciones.

Plataforma online Moodle

  • Moodle es una excelente elección como LMS (Learning Management System). Algunas ventajas:

    • Código abierto y altamente personalizable.

    • Permite gestión de usuarios, seguimiento de progreso, certificados automáticos, SCORM, etc.

    • Integración con plugins y herramientas externas como H5P, BigBlueButton, Zoom, etc.

  • Optimiza la navegación y la experiencia de usuario: que la plataforma sea clara, intuitiva y visualmente amigable.

  • Mobile first: Muchos usuarios acceden desde el móvil, así que asegúrate de que la plataforma esté bien adaptada.

Equipo Docente y Tutoría

  • Docentes formados en pedagogía digital: No basta con saber del tema; es crucial saber cómo enseñarlo online.

  • Disponibilidad y acompañamiento: Los alumnos valoran mucho el soporte y el feedback de tutores.

  • Presencia activa: En foros, comentarios y webinars. Esto reduce la sensación de soledad del estudiante online.

  • Capacitación constante del equipo docente en nuevas metodologías y herramientas digitales.

Interacción y Comunidad

  • Foros, chats y actividades colaborativas: fomentan el aprendizaje social.

  • Feedback entre pares: puede ser útil para mejorar y compartir conocimientos.

  • Gamificación social: rankings, badges, desafíos grupales.

  • Encuestas y sugerencias: para mejorar el curso con la opinión de los propios alumnos.